Phân tích Protein Khối lượng lớn bằng Phương pháp Phổ Khối lượng tại KTH
Tài liệu toàn văn academic cung cấp thông tin chuyên sâu và chi tiết. Truy cập nội dung học thuật đầy đủ từ các nguồn tài liệu uy tín.
KTH Royal Institute of Technology, School of Biotechnology
Biotechnology / Proteomics
Luan An
Luận án
Năm xuất bản
Số trang
135
Thời gian đọc
21 phút
Lượt xem
1
Lượt tải
0
Phí lưu trữ
40 Point
Tổng quan nhanh
- Chủ đề:
- Phân tích Protein Thông lượng Cao: Tổng quan
- Số trang:
- 135 trang
- Trường:
- KTH Royal Institute of Technology, School of Biotechnology
- Chuyên ngành:
- Biotechnology / Proteomics
- Tác giả:
- Tove Boström
- Năm:
- 2014
Tóm tắt nội dung luận án
I.Phân tích Protein Thông lượng Cao Tổng quan
Tài liệu này cung cấp một cái nhìn tổng thể về phân tích protein thông lượng cao. Nghiên cứu tập trung vào các phương pháp dựa trên khối phổ. Mục tiêu là phát triển kỹ thuật mới trong lĩnh vực proteomics. Tài liệu số này trình bày các đóng góp quan trọng. Nó mở rộng khả năng định danh và định lượng protein. Việc tìm kiếm toàn văn tài liệu này sẽ tiết lộ nhiều thông tin giá trị. Nó có thể được lập chỉ mục toàn văn cho các cơ sở dữ liệu khoa học. Nội dung văn bản được tổ chức rõ ràng. Điều này hỗ trợ việc truy xuất thông tin hiệu quả cho các nhà nghiên cứu.
1.1. Mục tiêu và Phạm vi Nghiên cứu
Tài liệu này tập trung vào phân tích và định lượng protein thông lượng cao. Nghiên cứu phát triển các phương pháp dựa trên khối phổ. Mục tiêu chính là cải thiện quy trình định danh và định lượng protein. Phạm vi bao gồm ba phần nghiên cứu chính. Các phương pháp mới mở rộng bộ công cụ proteomics. Người đọc sẽ tìm thấy thông tin chi tiết qua tính năng tìm kiếm toàn văn. Nội dung văn bản này cung cấp cái nhìn tổng thể về kỹ thuật hiện đại.
1.2. Tầm quan trọng của Phân tích Protein
Phân tích protein tạo ra thông tin quan trọng. Thông tin này liên quan đến chức năng protein. Nó cũng làm rõ sự tham gia của protein trong bệnh tật. Các chiến lược phân tích và định lượng khác nhau đã xuất hiện. Mỗi chiến lược phù hợp với các ứng dụng cụ thể. Việc lập chỉ mục toàn văn tài liệu này hỗ trợ truy xuất thông tin nhanh chóng. Phân tích văn bản có thể khám phá các mối liên hệ mới.
1.3. Cấu trúc Tài liệu và Các Phần Chính
Nghiên cứu được trình bày chia thành ba phần rõ ràng. Phần một mô tả phương pháp sàng lọc protein tái tổ hợp. Phần hai tập trung vào proteomics định lượng. Phần ba liên quan đến các kháng thể và xác thực chúng. Mỗi phần đều có vai trò trung tâm trong phát triển phương pháp. Tài liệu số này tổ chức thông tin một cách có hệ thống. Việc quản lý tài liệu hiệu quả được đảm bảo.
II.Phương pháp Sàng lọc Protein Hiệu suất Cao
Phần này của tài liệu trình bày việc phát triển các phương pháp sàng lọc protein. Các phương pháp này được thiết kế cho hiệu suất cao. Chúng đặc biệt hữu ích cho các fragment protein tái tổ hợp gắn His6. Nghiên cứu bao gồm hai điều tra chính. Một điều tra sử dụng định dạng 96 giếng. Điều tra kia thu nhỏ quy trình xuống cấp độ nanoliter. Việc này đạt được thông qua nền tảng ISET. Các kỹ thuật này có ý nghĩa quan trọng trong sản xuất protein quy mô lớn. Nội dung văn bản này chi tiết các bước phát triển. Khả năng tìm kiếm toàn văn giúp dễ dàng truy cập thông tin về các phương pháp này.
2.1. Phát triển Kỹ thuật Sàng lọc His6 tagged
Phần này mô tả phát triển hai phương pháp sàng lọc. Mục tiêu là protein tái tổ hợp gắn His6. Điều tra đầu tiên sử dụng sắc ký ái lực kim loại cố định (IMAC). Quá trình tinh sạch thực hiện trong định dạng 96 giếng. Các kỹ thuật này tăng cường tìm kiếm toàn văn các giải pháp tinh sạch. Trích xuất thông tin về quy trình được làm rõ.
2.2. Tối ưu hóa Sàng lọc Protein quy mô nhỏ
Điều tra thứ hai thu nhỏ quy trình sàng lọc. Quy mô giảm xuống nanoliter. Nền tảng chuẩn bị mẫu thu nhỏ (ISET) được sử dụng. Điều này tối ưu hóa việc sàng lọc ban đầu. Phương pháp này cải thiện hiệu quả sản xuất protein. Tài liệu số này làm nổi bật các bước tối ưu hóa này. Lập chỉ mục toàn văn giúp người dùng tìm kiếm cụ thể.
2.3. Ứng dụng trong Dự án Atlas Protein Người
Mục tiêu là phát triển phương pháp sàng lọc ban đầu. Phương pháp hỗ trợ dự án sản xuất protein thông lượng cao. Ví dụ là dự án Atlas Protein Người (HPA). Phương pháp tăng cường sản xuất và tinh sạch protein hiệu quả. Nội dung văn bản này cung cấp chi tiết ứng dụng thực tế. Phân tích văn bản của tài liệu có thể định hướng nghiên cứu.
III.Kỹ thuật Kvant hóa Protein Bằng Khối Phổ
Phần thứ hai của nghiên cứu tập trung vào proteomics định lượng. Nó mô tả việc sử dụng các fragment protein được đánh dấu đồng vị nặng. Các fragment này đóng vai trò là tiêu chuẩn nội bộ trong thí nghiệm khối phổ. Điều này cho phép định lượng protein tuyệt đối. Một khía cạnh quan trọng là so sánh mức độ protein với mức độ mRNA. Nghiên cứu thực hiện trên nhiều dòng tế bào. Các nhà khoa học đã quan sát thấy mối tương quan rõ ràng. Tài liệu số này cung cấp dữ liệu định lượng chi tiết. Việc lập chỉ mục toàn văn hỗ trợ truy xuất thông tin khoa học này. Phân tích văn bản sâu rộng có thể được thực hiện trên dữ liệu được trình bày.
3.1. Kvant hóa Protein Tuyệt đối với Đồng vị Nặng
Phần này tập trung vào proteomics định lượng. Protein fragment được sản xuất. Chúng có chứa axit amin được đánh dấu bằng đồng vị nặng. Các fragment này dùng làm tiêu chuẩn nội bộ. Chúng được sử dụng trong thí nghiệm khối phổ định lượng tuyệt đối. Phương pháp này cung cấp độ chính xác cao. Tài liệu số này mô tả kỹ thuật chi tiết. Truy xuất thông tin về tiêu chuẩn đồng vị rất dễ dàng.
3.2. So sánh Mức độ Protein và mRNA
Nghiên cứu so sánh mức độ protein và mRNA. Mức độ protein thu được bằng khối phổ định lượng. Mức độ mRNA thu được bằng giải trình tự RNA. Mục tiêu là tìm mối tương quan giữa chúng. Điều này cung cấp cái nhìn sâu sắc về biểu hiện gen. Trích xuất thông tin về mối tương quan này là cốt lõi.
3.3. Phân tích Dữ liệu qua Các Dòng Tế bào
Biểu hiện của 32 protein khác nhau được nghiên cứu. Nghiên cứu thực hiện trên sáu dòng tế bào khác nhau. Một mối tương quan rõ ràng giữa protein và mRNA được quan sát. Điều này xảy ra khi phân tích gen ở cấp độ cá thể. Kết quả này củng cố sự hiểu biết về quy định gen. Phân tích văn bản tài liệu này sẽ tiết lộ các mẫu dữ liệu. Quản lý tài liệu khoa học này rất quan trọng.
IV.Phát triển và Xác thực Kháng thể Proteomics
Phần cuối của tài liệu tập trung vào các kháng thể. Các kháng thể này được tạo ra trong dự án Atlas Protein Người (HPA). Một phương pháp xác thực kháng thể đã được phát triển. Phương pháp này sử dụng miễn dịch protein kết hợp khối phổ. Nó đảm bảo độ tin cậy cho các kháng thể. Một nghiên cứu khác mô tả kỹ thuật định lượng protein đa kênh. Kháng thể được dùng để bắt giữ các peptide tryptic. Các fragment protein được đánh dấu đồng vị nặng được thêm vào. Điều này cho phép định lượng đồng thời 20 protein. Tài liệu số này đóng góp đáng kể cho lĩnh vực proteomics. Tìm kiếm toàn văn các kỹ thuật này sẽ dẫn đến các phát hiện quan trọng được mô tả.
4.1. Phương pháp Xác thực Kháng thể Đột phá
Phần này sử dụng các kháng thể từ dự án HPA. Một phương pháp xác thực kháng thể đã được mô tả. Phương pháp này kết hợp miễn dịch protein. Kỹ thuật này nối với khối phổ. Nó đảm bảo độ tin cậy của kháng thể. Tìm kiếm toàn văn các phương pháp xác thực sẽ dẫn đến đây. Tài liệu số này là nguồn tham khảo quý giá.
4.2. Kvant hóa Protein Đa chiều với Kháng thể
Một nghiên cứu thứ hai đã phát triển phương pháp mới. Kháng thể được sử dụng để bắt peptide tryptic. Các peptide này từ dịch ly giải tế bào đã tiêu hóa. Protein fragment được đánh dấu bằng đồng vị nặng được thêm vào. Điều này cho phép định lượng 20 protein ở định dạng đa kênh. Đây là một bước tiến đáng kể trong định lượng protein. Trích xuất thông tin về kỹ thuật này rất quan trọng.
4.3. Đóng góp cho Dự án Atlas Protein Người
Nghiên cứu này đóng góp lớn cho dự án HPA. Các phương pháp mới hỗ trợ đánh giá kháng thể. Chúng cũng cải thiện khả năng định lượng. Điều này mở rộng công cụ proteomics cho nghiên cứu trong tương lai. Nội dung văn bản này chi tiết các đóng góp. Phân tích văn bản sẽ làm nổi bật các thành tựu.
V.Tăng cường Công cụ Proteomics Qua Tài liệu này
Tổng hợp lại, nghiên cứu này đã mở rộng đáng kể bộ công cụ proteomics. Nó cung cấp các phương pháp mới để phân tích và định lượng protein. Khả năng làm việc với thông lượng cao được cải thiện. Tài liệu số này là một nguồn tài nguyên quý giá. Nó đóng góp vào sự hiểu biết về sản xuất và xác thực protein. Các kỹ thuật được mô tả sẽ hỗ trợ nhiều ứng dụng khoa học. Việc quản lý tài liệu hiệu quả sẽ giúp các nhà khoa học tiếp cận kiến thức này. Công nghệ xử lý ngôn ngữ tự nhiên (NLP) có thể khai thác thêm thông tin từ nội dung văn bản này. Trích xuất thông tin khoa học chưa từng có được thực hiện dễ dàng.
5.1. Mở rộng Khả năng Phân tích Proteomics
Nghiên cứu trình bày đã mở rộng bộ công cụ proteomics. Các phương pháp có sẵn cho phân tích protein được cải thiện. Khả năng định lượng protein thông lượng cao được nâng cao. Điều này bao gồm nhiều kỹ thuật tiên tiến. Tài liệu số này tổng hợp các phát hiện quan trọng. Việc lập chỉ mục toàn văn tài liệu hỗ trợ nghiên cứu. Nó cung cấp thông tin chi tiết có thể truy xuất.
5.2. Tối ưu hóa Quy trình Sản xuất Protein
Các phương pháp phát triển hỗ trợ tối ưu hóa quy trình. Cụ thể là trong sản xuất và tinh sạch protein. Hiệu quả được tăng lên đáng kể. Điều này có ý nghĩa quan trọng cho các dự án quy mô lớn. Quản lý tài liệu tốt giúp tổ chức thông tin này. Phân tích văn bản có thể so sánh các quy trình khác nhau.
5.3. Trích xuất Thông tin Quan trọng từ Tài liệu
Tài liệu này là một nguồn thông tin phong phú. Các nhà nghiên cứu có thể trích xuất thông tin về proteomics. Thông tin bao gồm các chiến lược sàng lọc và định lượng. Nó cũng bao gồm xác thực kháng thể. Việc tìm kiếm toàn văn trong cơ sở dữ liệu tài liệu sẽ nhanh chóng tìm thấy tài liệu này. Công nghệ xử lý ngôn ngữ tự nhiên (NLP) có thể phân tích sâu hơn nội dung. Tài liệu này đóng vai trò là tài liệu số tham khảo cho các nghiên cứu tương lai.
Mục lục chi tiết luận án
Tải xuống file đầy đủ để xem toàn bộ nội dung
Tải đầy đủ (135 trang)Trích đoạn nội dung luận án
Tải xuống để đọc toàn bộHigh-throughput protein analysis using mass spectrometry-based methods Tove Boström KTH Royal Institute of Technology School of Biotechnology Stockholm 2014 c Tove Boström 2014 KTH Royal Institute of Technology School of Biotechnology Division of Protein Technology AlbaNova University center SE-106 91 Stockholm Sweden Paper I c 2011 Wiley-VCH Verlag GmbH & Co. KGaA, Weinheim Paper II c 2012 American Chemical Society Paper IV c 2014 American Chemical Society Paper V c 2014 The American Society for Biochemistry and Molecular Biology, Inc. ISBN 978-91-7595-292-5 TRITA-BIO Report 2014:15 ISSN 1654-2312 Printed by Universitetsservice US-AB 2014 "If you can dream it, you can do it." - Walt Disney Abstract In the field of proteomics, proteins are analyzed and quantified in high numbers. Protein analysis is of great importance and can for example generate information regarding protein function and involvement in disease.
Different strategies for protein analysis and quan- tification have emerged, suitable for different applications. The focus of this thesis lies on protein identification and quantification using different setups and method development has a central role in all included papers. The presented research can be divided into three parts. Part one describes the develop- ment of two different screening methods for His6-tagged recombinant protein fragments.
In the first investigation, proteins were purified using immobilized metal ion affinity chro- matography in a 96-well plate format and in the second investigation this was downscaled to nanoliter-scale using the miniaturized sample preparation platform, integrated selective enrichment target (ISET). The aim of these investigations was to develop methods that could work as an initial screening step in high-throughput protein production projects, such as the Human Protein Atlas (HPA) project, for more efficient protein production and purification. In the second part of the thesis, focus lies on quantitative proteomics. Protein fragments were produced with incorporated heavy isotope-labeled amino acids and used as internal standards in absolute protein quantification mass spectrometry experiments.
The aim of this investigation was to compare the protein levels obtained using quanti- tative mass spectrometry to mRNA levels obtained by RNA sequencing. Expression of 32 different proteins was studied in six different cell lines and a clear correlation between protein and mRNA levels was observed when analyzing genes on an individual level. The third part of the thesis involves the antibodies generated within the HPA project. In the first investigation a method for validation of antibodies using protein immunoenrichment coupled to mass spectrometry was described.
In a second study, a method was developed where antibodies were used to capture tryptic peptides from a digested cell lysate with spiked in heavy isotope-labeled protein fragments, enabling quantification of 20 proteins in a multiplex format. Taken together, the presented research has expanded the pro- teomics toolbox in terms of available methods for protein analysis and quantification in a high-throughput format. Keywords: Proteomics, mass spectrometry, affinity proteomics, immunoenrichment, immunoprecipitation, IMAC, screening, protein production, protein purification, ISET, quantification, SILAC, stable isotope standard, antibody validation I Sammanfattning I det forskningsområde som kallas proteomik studeras proteiner i stor skala, det vill säga många proteiner parallellt. Genom att studera proteiner kan man till exempel få informa- tion om proteiners funktion och huruvida ett protein är involverat i en sjukdomsprocess.
I denna avhandling har proteiner analyserats och kvantifierats på olika sätt och i alla inkluderade artiklar har metodutveckling haft en central roll. Forskningen som presenteras i denna avhandling kan delas in i tre delar. Den första delen beskriver två nya screeningmetoder för His6 -taggade rekombinanta proteinfragment. I ett första projekt renades proteinerna med immobiliserad metalljonsaffinitetskromatografi i ett 96-brunnsformat och i ett andra projekt skalades detta ner till nanoliter-format genom att använda provberedningsplattformen ISET.
Målet med dessa projekt var att utveckla metoder som skulle kunna användas som ett initialt screeningsteg vid storskalig protein- produktion för att öka effektiviteten. I del två ligger fokus på kvantifiering av proteiner. Proteinfragment producerades med aminosyror med inkorporerade tunga isotoper och an- vändes sedan som interna standarder i absolut kvantifiering med masspektrometri. Målet var här att jämföra proteinnivåer med motsvarande mRNA-nivåer, vilka bestämts med RNA-sekvensering.
Koncentrationen av 32 proteiner bestämdes i sex olika cellinjer och det fanns en tydlig korrelation mellan protein och mRNA när generna studerades indi- viduellt. I den sista delen av avhandlingen användes antikroppar som tagits fram inom proteinatlas-projektet (HPA). I ett projekt utvecklades en metod för validering av an- tikroppar genom att först använda antikropparna för anrikning av målproteinerna från ett cellysat och sedan med masspektrometri bestämma proteinernas identitet. I ett andra projekt användes antikropparna istället för att fånga ut peptider från ett trypsinklyvt cellysat.
I en setup där tunga isotopinmärkta proteinfragment adderades till lysatet före klyvning kunde 20 proteiner kvantifieras parallellt. Sammantaget har de presenterade projekten bidragit till att möjligheterna för parallell proteinanalys och kvantifiering har ökat. II List of publications This thesis is based on the five publications listed below. The publications are referred to by Roman numbers (I-V) and are included in the Appendix of the thesis.
Parallel production and verification of protein products us- ing a novel high-throughput method. 1018-25 Paper II Adler B. and Lau- rell T. Miniaturized and automated high-throughput veri- fication of proteins in the ISET platform with MALDI MS.
Anal Chem (2012) vol. 8663-9 Paper III Boström T. Investigating the correlation of protein and mRNA levels in human cell lines using quantitative proteomics and transcriptomics. Submitted Paper IV Boström T.
Investigating the applicability of antibodies gen- erated within the Human Protein Atlas as capture agents in immunoenrichment coupled to mass spectrometry. J Proteome Res (2014) vol. Immuno-proteomics using polyclonal anti- bodies and stable isotope labeled affinity-purified recom- binant proteins. Mol Cell Proteomics (2014) vol.
1611-24 *Both authors contributed equally to the work. III Published work not included in the thesis Boström T. Purification systems based on bacterial surface proteins.), (2012) ISBN: 978-953-307-831-1, InTech *Both authors contributed equally to the work. IV Contributions to the included papers Paper I Performed all experimental work and data analysis to- gether with coauthor.
Wrote the manuscript together with coauthors. Paper II Performed all experimental work together with coauthor. Wrote the manuscript together with coauthors. Paper III Performed all experimental work except cell cultivation and performed all MS data analysis.
Wrote the manuscript together with coauthors. Paper IV Performed all experimental work and all MS data analysis. Wrote the manuscript together with coauthors. Paper V Performed cell cultivation, MS sample preparation and all MS data analysis.
Produced and quantified all heavy isotope-labeled PrESTs. Contributed to the writing of the manuscript. V Abbreviations 2D-GE two-dimensional gel electrophoresis Ab antibody ABD albumin binding domain ABP albumin binding protein ACM antibody colocalization microarray APEX absolute protein expression AQUA absolute quantification AUC area under curve BAC bacterial artificial chromosome BCA bicinchoninic acid cAb capture antibody CDR complementary determining region CIMS context-independent motif specific CR cross reactivity dAb detection antibody DARPin designed ankyrin repeat protein DNA deoxyribonucleic acid DWP deep well plate EGTA ethylene glycol tetraacetic acid EIA enzyme immunoassay ELISA enzyme-linked immunosorbent assay emPAI exponentially modified protein abundance index ESI electrospray ionization EtEP equimolarity through equalizer peptide Fab fragment antigen binding FASP filter-aided sample preparation Fc fragment crystallizable FT-ICR fourier transform ion cyclotron resonance GFP green fluorescent protein GPS global proteome survey His6 hexahistidine HPA human protein atlas IBAQ intensity-based absolute quantification ICAT isotope coded affinity tag IEF isoelectric focusing Ig immunoglobulin IMAC immobilized metal ion affinity chromatography iMALDI immuno-MALDI IRMA immunoradiometric assay ISET integrated selective enrichment target iTRAQ isobaric tags for relative and absolute quantification VI LC liquid chromatography LFQ label free quantification mAb monoclonal antibody MALDI matrix-assisted laser desorption ionization MRM multiple reaction monitoring mRNA messenger ribonucleic acid MS mass spectrometry MSIA mass spectrometric immunoassay MS/MS tandem mass spectrometry m/z mass over charge pAb polyclonal antibody PCR polymerase chain reaction PEA proximity elongation assay PFL protein frequency library pI isoelectric point PLA proximity ligation assay PMF peptide mass fingerprint PrEST protein epitope signature tag PSAQ protein standard absolute quantification PSM peptide spectrum match PTM post-translational modification QconCAT quantification concatamer QUICK quantitative immunoprecipitation combined with knockdown RIA radioimmunoassay RNA ribonucleic acid scfv single-chain fragment variable SDS-PAGE sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis SILAC stable isotope labeling by/with amino acids in cell culture SISCAPA stable isotope standards and capture by anti-peptide antibodies SMAC sequential multiplex analyte capturing SRM selected reaction monitoring TAP tandem affinity purification TEV tobacco etch virus TMT tandem mass tag TOF time of flight TXP Triple X Proteomics µTAS micro total analysis system WB western blot VII Preface When I started my journey as a PhD student in 2010, I was convinced that I would find a cure for cancer. Well, maybe not a cure, but at least that I would on my dissertation day have been part of the development of a fab- ulous diagnostic platform that would revolutionize the medical field.
Five years seemed like such a long time - just think of all the things I could ac- complish! I soon realized however, that I might have overestimated things slightly. I came to the understanding that when doing research, five years is actually quite a short period. My enthusiasm was slowly replaced with dis- couragement and I started wondering if I would manage to achieve anything at all. Eventually, things started to turn and I could experience the joy of one good result that was easily enough to outweigh a dozen bad ones.
Today I know that every little step towards a cure for cancer, or any other goal one may have, is of great importance and truly makes a difference. Therefore I feel extremely happy and proud that I have made a contribution to the field of proteomics through this thesis. The new findings that are presented in this book are mainly the development of novel tools to study proteins in different ways. By taking advantage of the large resource of both antibodies and antigens available within the Human Protein Atlas project, methods for protein identification, quantification and antibody validation have been developed.
Present investigations are sum- marized in chapter 6. In order for the reader to get a better picture of the research as well as its impact on science, an overview of the field is presented in chapters 1-5. Many people have contributed to the research presented in this thesis and to you I am most grateful. Tove Boström Stockholm, August 25th 2014 VIII Contents Abstract.
II List of publications. III Contributions to the included papers. VIII 1 Proteins and proteomics 1 What are proteins and why should we study them?. 1 The challenges of proteomics.
4 The proteome - complex but informative. 6 2 Mass spectrometry-based proteomics 9 History of mass spectrometry. 9 Mass spectrometry for protein analysis. 10 Sample preparation for mass spectrometry.
15 Data independent acquisition methods. 19 Proteome coverage and sensitivity. 29 3 Affinity proteomics 33 History of the immunoassay. 33 Antibodies as affinity reagents.
34 Alternative affinity reagents. 37 The Human Protein Atlas. 42 Cross-reactivity in immunoassays. 46 IX CONTENTS 4 Bridging affinity proteomics with mass spectrometry 49 Benefits of combining immunoenrichment with mass spectrom- etry.
50 Immunoenrichment of protein or peptide groups. 58 5 Miniaturization 61 Miniaturization in proteomics. 61 The ISET platform. 64 6 Present Investigation 67 Summary.
67 Development of screening methods for recombinant protein production (papers I and II). 68 Absolute MS-based protein quantification to study the corre- lation between protein and mRNA levels (paper III). 75 Antibody validation using immunoenrichment coupled to mass spectrometry (paper IV). 79 Protein quantification using immunoenrichment and mass spec- trometry (paper V).
88 7 Populärvetenskaplig sammanfattning 91 8 Acknowledgements 93 9 Bibliography 97 X Chapter 1 Proteins and proteomics What are proteins and why should we study them? Proteins are everything and they are everywhere. In almost all biochemical processes, you will find that proteins are among the key players. As Francis Crick pointed out in 1958: "The most significant thing about proteins is that they can do almost anything" [1].
Nội dung được bảo vệ bản quyền — Tải xuống đầy đủ
Trích dẫn luận án này
Tove Boström (2014). Phân tích Protein với Khối lượng lớn bằng MS [Luận án tiến sĩ, KTH Royal Institute of Technology, School of Biotechnology]. LuanAn.net. https://luanan.net/quan-ly-giao-duc/quan-ly-giao-duc-dai-hoc/fulltext01-3
Câu hỏi thường gặp
Luận án "Phân tích Protein với Khối lượng lớn bằng MS" nghiên cứu về vấn đề gì?
Tài liệu toàn văn academic cung cấp thông tin chuyên sâu và chi tiết. Truy cập nội dung học thuật đầy đủ từ các nguồn tài liệu uy tín.
Luận án "Phân tích Protein với Khối lượng lớn bằng MS" được bảo vệ tại trường nào?
Luận án này được bảo vệ tại KTH Royal Institute of Technology, School of Biotechnology. Năm bảo vệ: 2014.
Luận án "Phân tích Protein với Khối lượng lớn bằng MS" thuộc chuyên ngành gì?
Luận án "Phân tích Protein với Khối lượng lớn bằng MS" thuộc chuyên ngành Biotechnology / Proteomics. Danh mục: Quản Lý Giáo Dục Đại Học.
Luận án "Phân tích Protein với Khối lượng lớn bằng MS" có bao nhiêu trang?
Luận án "Phân tích Protein với Khối lượng lớn bằng MS" có 135 trang. Bạn có thể xem trước một phần tài liệu ngay trên trang web trước khi tải về.
Cách tải luận án "Phân tích Protein với Khối lượng lớn bằng MS" về máy như thế nào?
Để tải luận án về máy, bạn nhấn nút "Tải xuống ngay" trên trang này, sau đó hoàn tất thanh toán phí lưu trữ. File sẽ được tải xuống ngay sau khi thanh toán thành công. Hỗ trợ qua Zalo: 0559 297 239.